Az 5S riboszomális RNS (5S rRNS) körülbelül 120 nukleotidos riboszomális RNS, tömege 40 kDa. A riboszóma nagy alegységének szerkezeti és funkciós része minden doménben, kivéve az állatok és gombák mitokondriális riboszómáit. Az 5S a molekula ultracentrifugában mutatott szedimentációs sebességére utal, ennek mértékegysége a Svedberg-egység (S).[1]
A prokariótákban az 5S rRNS-gén jellemzően az rRNS-operonokban található a kis és nagy rRNS-alegység után, és policisztronosprekurzorrá íródik át.[3] Az eukarióta magi genomokra jellemző a több 5S rRNS-génmásolat (5S rDNS) tandem ismétlődésekben, példányszám fajonként eltérő példányszámmal.[4][5] Az eukarióta 5S rRNS-t az RNS-polimeráz III állítja elő, míg a többi eukarióta rRNS az RNS-polimeráz I által átírt 45S prekurzorról válik le. Xenopus-oocitákban a 9 cinkujjasTFIIIAtranszkripciós faktor 4–7. ujja az 5S rRNS központi részéhez köthet.[6][7] Ez gátolja az 5S rRNS további transzkripcióját és stabilizálja az átírt rRNS-t a riboszóma-összeállításig.[8]
Az 5S rRNS másodlagos szerkezetében 5 hélix (I–V.), 4 kör (B–E) és 1 zsanér (A) van, ezek együtt Y alakú szerkezetet alkotnak. A C és D körök terminális hajtűk, a B és E belsők.[4] Filogenetikai tanulmányok alapján az I. és III. hélix valószínűleg ősi.[9] A III. hélixben 2 erősen állandósult adenozin van.[10] A hajtűszerkezetű V. hélix feltehetően kölcsönhat a TFIIIA-val.[4]
Több molekuláris technika, például immun-elektronmikroszkópia, krioelektron-mikroszkópia, molekulaközi keresztkötések és röntgenkrisztallográfia használatával az 5S rRNS helye a nagy riboszóma-alegységben nagy pontossággal ismert. Baktériumokban és archeákban ezen egység 2 RNS-ből áll, az 5S és a 23S rRNS-ből, valamint számos kapcsolódó fehérjéből áll.[3][12]
Az eukarióta LSU 5S, 5,8S és 28S rRNS-ből és még több fehérjéből áll.[13][14] Az LSU 3 dimenziós szerkezete viszonylag sima felszínt mutat, az átellenes oldalon 3 kiemelkedéssel, az L1, a központi kiemelkedéssel (CP) és az L7/L12-tönkkel. Az L1 kiemelkedés és az L7/L12-tönk a CP-t laterálisan veszi körül. Az 5S rRNS a CP-ben van, létrejöttében fontos. A CP többi fő alkotói a 23S (eukariótákban 28S) rRNS és több fehérje, például az L5, az L18, az L25 és az L27.[15]
Az 5S rRNS pontos funkciója nem ismert. E. coliban az 5S rRNS-deléciók csökkentik a fehérjeszintézis-sebességet és jobban hatnak az életképességre, mint más (16S és 23S) rRNS-gének hasonló arányú deléciója.[16] Krisztallográfiai tanulmányok alapján az 5S rRNS-kötő fehérjék és a központi kiemelkedés más hasonló fehérjéi a tRNS-kötésben fontosak.[15] Ezenkívül a peptidiltranszferáz- és GTPáz-asszociáló központot alkotó 5S és 23S rRNS topográfiai és fizikai közelsége alapján az 5S rRNS mediátoor a riboszóma két funkciós központja közt az 5S rRNS-kötő fehérjék és a központi kiemelkedés más központikiemelkedés-alkotókkal együttes alkotóegységközihíd- és tRNS-kötőhely-keletkezés révén.[15]
Az eukarióta citoszol-riboszóma 4 rRNS-ből és több mint 80 fehérjéből áll.[14][17] Az 5S rRNS 3’-végeit transzkripció után csak működő ribonukleáz T-homológok, például Saccharomyces cerevisiae esetén a Rex1p vághatják az érett hosszra.[18] A 60S és 40S riboszómaalegységek a magból a citoplazmába kerülnek, ahol érett és transzlációképes 80S riboszómát alkotnak. Hogy mikor kerül ebbe 5S rRNS, nem ismert,[4] de általánosan elfogadott, hogy az 5S rRNS a 60S-prekurzor 90S-be kerül kis riiboszómafüggetlen 5S–L5 RNP-komplexként.[17]
Az 5S rRNS–La fehérje kölcsönhatás megakadályozza az exonukleázok általi bontását.[19] A La minden eukarióta sejtmagjában megtalálható, és több, az RNS pol III által átírt RNS-sel asszociál a 3’-oligouridin révén, stabilizálva és szerkezetet adva nekik.[4][20]
Az eukarióta sejtekben az L5 riboszómafehérje az 5S rRNS-sel asszociál és stabilizálja azt, preriboszomális ribonukleoproteint (RNP) alkotva, mely a citoszolban és a magban is megtalálható. Hiánya akadályozza az 5S magba kerülését és csökkenti a riboszómakeletkezést.[4]
A prokariótákban az 5S rRNS az L5, L18 és L25 riboszómafehérjékhez köt, eukariótákban csak az L5-tel ismert kölcsönhatása.[21] A Trypanosoma brucei, a tripanoszomiázis okozója esetén az 5S rRNS két közeli rokon RNS-kötő fehérjével, a P34-gyel és a P37-tel kölcsönhat, ezek elvesztése csökkenti a szintjét.[4]
A mitokondriumok és plasztiszok (endoszimbiontabaktérium-eredetű sejtalkotók) és bakteriális rokonaik transzlációs szerkezetei számos közös jellemzővel rendelkeznek, de sok a különbség is. A sejtszervecskegenomok az SSU- és LSU-rRNS-eket kivétel nélkül kódolják, de az 5S rRNS-gének (rrn5) eloszlása a legegyenlőtlenebb. Az rrn5 a legtöbb plasztiszban könnyen azonosítható és gyakori. Ezzel szemben a mitokondriális rrn5-öt eleinte növényekre és kevés protisztára korlátozottnak gondolták.[22][23] További távolabbi sejtalkotó-5S-rRNS-eket szekvencia-összetételi torzításról és szerkezeti variációról szóló információval rendelkező kovarianciamodellekkel azonosítottak.[24] Ez további 5S rRNS-géneket azonosított a legtöbb protiszta mitokondriumai és bizonyos apikoplasztiszok genomjaiban.
A legtöbb sárgásmoszat mitokondriális 5S rRNS-ei másodlagos szerkezetei a legsokszínűbbek.[24] A barnamoszatok permutált másodlagos szerkezetei a legkülönösebb esetek, ahol az 5′- és 3′-végeket összekapcsolja I. záróhélix helyén zárt hajtű van, nyílt háromirányú kapcsolatot adva.
2014-es ismeretek szerint csak kevés csoport, például az állatok, a gombák, az Alveolata és az ostoros moszatokmitokondriális DNS-ében nincs ily gén.[24] Az egyébként az 5S rRNS és kapcsolódó fehérjéi által elfoglalt központi kiemelkedés különböző módokon átalakult. Gombák mitokondriális riboszómáiban az 5S rRNS-t LSU-rRNS-bővítő szekvenciák váltották fel.[25] A Kinetoplastida központi kiemelkedését evolúciósan új mitokondriális riboszomális fehérjék foglalják el.[26] Az állatok mitokondriális riboszómáiban speciális mitokondriális tRNS (gerincesekben Val) van a hiányzó 5S rRNS helyén.[27][28]
↑Szymanski M, Barciszewska MZ, Erdmann VA, Barciszewski J (2002. január 1.). „5S Ribosomal RNA Database”. Nucleic Acids Research30 (1), 176–178. o. DOI:10.1093/nar/30.1.176. PMID11752286. PMC99124.
↑Mueller F, Sommer I, Baranov P, Matadeen R, Stoldt M, Wöhnert J, Görlach M, van Heel M, Brimacombe R (2000. április 1.). „The 3D arrangement of the 23 S and 5 S rRNA in the Escherichia coli 50 S ribosomal subunit based on a cryo-electron microscopic reconstruction at 7.5 A resolution”. Journal of Molecular Biology298 (1), 35–59. o. DOI:10.1006/jmbi.2000.3635. PMID10756104.
↑Douet J, Tourmente S (2007. július 1.). „Transcription of the 5S rRNA heterochromatic genes is epigenetically controlled in Arabidopsis thaliana and Xenopus laevis”. Heredity99 (1), 5–13. o. DOI:10.1038/sj.hdy.6800964. PMID17487217.
↑McBryant SJ, Veldhoen N, Gedulin B, Leresche A, Foster MP, Wright PE, Romaniuk PJ, Gottesfeld JM (1995. április 1.). „Interaction of the RNA binding fingers of Xenopus transcription factor IIIA with specific regions of 5 S ribosomal RNA”. Journal of Molecular Biology248 (1), 44–57. o. DOI:10.1006/jmbi.1995.0201. PMID7731045.
↑Searles MA, Lu D, Klug A (2000. augusztus 1.). „The role of the central zinc fingers of transcription factor IIIA in binding to 5 S RNA”. Journal of Molecular Biology301 (1), 47–60. o. DOI:10.1006/jmbi.2000.3946. PMID10926492.
↑Pelham HR, Brown DD (1980. július 1.). „A specific transcription factor that can bind either the 5S RNA gene or 5S RNA”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America77 (7), 4170–4174. o. DOI:10.1073/pnas.77.7.4170. PMID7001457. PMC349792.
↑Sun FJ, Caetano-Anollés G (2009. november 1.). „The evolutionary history of the structure of 5S ribosomal RNA”. Journal of Molecular Evolution69 (5), 430–443. o. DOI:10.1007/s00239-009-9264-z. PMID19639237.
↑DiNitto JP, Huber PW (2001. október 1.). „A role for aromatic amino acids in the binding of Xenopus ribosomal protein L5 to 5S rRNA”. Biochemistry40 (42), 12645–12653. o. DOI:10.1021/bi011439m. PMID11601989.
↑Ban N, Nissen P, Hansen J, Moore PB, Steitz TA (2000. augusztus 1.). „The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 A resolution”. Science289 (5481), 905–920. o. DOI:10.1126/science.289.5481.905. PMID10937989.
↑Tirumalai MR, Kaelber JT, Park DR, Tran Q, Fox GE (2020. október 1.). „Cryo-electron microscopy visualization of a large insertion in the 5S ribosomal RNA of the extremely halophilic archaeon Halococcus morrhuae”. FEBS Open Bio10 (10), 1938–1946. o. DOI:10.1002/2211-5463.12962. PMID32865340. PMC7530397.
↑Turowski TW, Tollervey D (2015). „Cotranscriptional events in eukaryotic ribosome synthesis”. Wiley Interdisciplinary Reviews. RNA6 (1), 129–139. o. DOI:10.1002/wrna.1263. PMID25176256.
↑Ammons D, Rampersad J, Fox GE (1999. január 1.). „5S rRNA gene deletions cause an unexpectedly high fitness loss in Escherichia coli”. Nucleic Acids Research27 (2), 637–642. o. DOI:10.1093/nar/27.2.637. PMID9862991. PMC148226.
↑van Hoof A, Lennertz P, Parker R (2000. március 1.). „Three conserved members of the RNase D family have unique and overlapping functions in the processing of 5S, 5.8S, U4, U5, RNase MRP and RNase P RNAs in yeast”. The EMBO Journal19 (6), 1357–1365. o. DOI:10.1093/emboj/19.6.1357. PMID10716935. PMC305676.
↑Maraia RJ, Intine RV (2002). „La protein and its associated small nuclear and nucleolar precursor RNAs”. Gene Expression10 (1–2), 41–57. o. PMID11868987. PMC5977531.
↑Moore PB (2001. március 1.). „The ribosome at atomic resolution”. Biochemistry40 (11), 3243–3250. o. DOI:10.1021/bi0029402. PMID11258942.
↑Bullerwell CE, Schnare MN, Gray MW (2003. március 1.). „Discovery and characterization of Acanthamoeba castellanii mitochondrial 5S rRNA”. RNA9 (3), 287–292. o. DOI:10.1261/rna.2170803. PMID12592002. PMC1370395.
↑Bullerwell CE, Burger G, Gott JM, Kourennaia O, Schnare MN, Gray MW (2010. május 1.). „Abundant 5S rRNA-like transcripts encoded by the mitochondrial genome in amoebozoa”. Eukaryotic Cell9 (5), 762–773. o. DOI:10.1128/EC.00013-10. PMID20304999. PMC2863963.
↑ abcValach M, Burger G, Gray MW, Lang BF (2014. december 1.). „Widespread occurrence of organelle genome-encoded 5S rRNAs including permuted molecules”. Nucleic Acids Research42 (22), 13764–13777. o. DOI:10.1093/nar/gku1266. PMID25429974. PMC4267664.
↑Amunts A, Brown A, Bai XC, Llácer JL, Hussain T, Emsley P, Long F, Murshudov G, Scheres SH, Ramakrishnan V (2014. március 1.). „Structure of the yeast mitochondrial large ribosomal subunit”. Science343 (6178), 1485–1489. o. DOI:10.1126/science.1249410. PMID24675956. PMC4046073.
↑Sharma MR, Booth TM, Simpson L, Maslov DA, Agrawal RK (2009. június 1.). „Structure of a mitochondrial ribosome with minimal RNA”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America106 (24), 9637–9642. o. DOI:10.1073/pnas.0901631106. PMID19497863. PMC2700991.
↑Brown A, Amunts A, Bai XC, Sugimoto Y, Edwards PC, Murshudov G, Scheres SH, Ramakrishnan V (2014. november 1.). „Structure of the large ribosomal subunit from human mitochondria”. Science346 (6210), 718–722. o. DOI:10.1126/science.1258026. PMID25278503. PMC4246062.
↑Greber BJ, Boehringer D, Leibundgut M, Bieri P, Leitner A, Schmitz N, Aebersold R, Ban N (2014. november 1.). „The complete structure of the large subunit of the mammalian mitochondrial ribosome”. Nature515 (7526), 283–286. o. DOI:10.1038/nature13895. PMID25271403.
Ez a szócikk részben vagy egészben a(z) 5S ribosomal RNA című angol Wikipédia-szócikk ezen változatának fordításán alapul. Az eredeti cikk szerkesztőit annak laptörténete sorolja fel. Ez a jelzés csupán a megfogalmazás eredetét és a szerzői jogokat jelzi, nem szolgál a cikkben szereplő információk forrásmegjelöléseként.
Az itt található információk kizárólag tájékoztató jellegűek, nem minősülnek orvosi szakvéleménynek, nem pótolják az orvosi kivizsgálást és kezelést. A cikk tartalmát a Wikipédia önkéntes szerkesztői alakítják ki, és bármikor módosulhat.