Метилюванняаденозину забезпечується великим m6A метилтрансферазним комплексом, що містить METTL3 як SAM-зв'язуючу субодиницю.[17]In vitro метилтрансферазний комплекс переважно метилює олігонуклеотиди РНК у складі консенсусних сайтів RRAHU [18]. В новітніх дослідженнях було охарактеризовано інші ключові компоненти комплексу m6A-метилтрансферази ссавців, включаючи METTL14 [19][20] , Wilms tumor 1 associated protein (WTAP) [21], KIAA1429 [22] та METTL5 [23]. З початку 2010-х років йшла дискусія стосовно динамічності та зворотності m6А-метилування в мРНК[24] і відкриття в 2011 першої m6A-деметилази, fat mass and obesity-associated protein (FTO)[25] підтвердив цю гіпотезу і розпалило інтерес досліджеників. Пізніше було також виявлено другу m6A-деметилазу, гомолог 5 alkB (ALKBH5).[26]
Біологічні функції m6A реалізуються за допомогою специалізованних білків, що специфічно розпізнають метильований аденозин і зв'язують РНК у відповідних модифікованиз сайтах..Ці РНК-зв'язуючі білки відповідно називають m6A-рідерами. Сімейство білків із гомологами домену YT521-B (YTH) у своєму складі ( YTHDF1, YTHDF2, YTHDF3 і YTHDC1 ) були охарактеризовані як безпосередні m6A-рідери із специалізованим m6A-зв'язуючим сайтом[16][27][28][29][30]. Інсуліноподібні фактори росту 2-мРНК-зв'язуючі білки 1, 2 та 3 (IGF2BP1–3) розглядаються як новий клас m6A-рідерів[31]..IGF2BP використовують K-гомологічні домени (KH), щоб вибірково розпізнати метильлвані мРНК, та сприяти їх трансляції та стабільності.
Ці m6A-рідери, разом з m6A метилтрансферазами (райтерами) та деметилазами (ерайзерами), складають складний механізм динамічної регуляції метилування мРНК, за допомогою якого райтери та ерайщери визначають розподіл m6A-модифікацій на РНК, тоді як читачі опосередковують m6A-залежні функції[32].
У дріжджах, що брунькуються ( Sacharomyces cerevisiae ), гомолог METTL3, IME4 експресується в диплоїдних клітинах у відповідь на нестачу азоту та вуглецю і необхідний для метилювання мРНК та ініціації правильного мейозу та споруляції[13][14]. мРНК IME1 та IME2, ключових регуляторів мейозу, як відомо, є мішенями для метилювання, як і транскрипти самого IME4.
У рослин більша частина m6A-сайтів знаходиться в межах 150 нуклеотидів до початку poly(A) хвоста[33].
Мутації MTA, гомолоа METTL3 у Arabidopsis thaliana, призводять до призупинення розвитку ембріона на глобулярній стадії. Зниження рівня m6A-метилування у зрілих рослинах призводить до різкої змінени швидкості росту та гомеотичних відхилень в процесі розвитку квіток[33].
Мапінг m6A-метилування у РНК людини та миші виявило понад 18 000 активних m6А-сайтів у транскриптах понад 7000 людських генів з консенсусною послідовністю [G/A/U] [G> A]m6AC[U>A/C] [15][16][34]. Локалізація окремих m6A-сайтів у багатьох мРНК дуже схожа між людиною та мишею повнотранскриптомний аналіз аиявив, що m6A-сайти пов'язані із еволюційно консервативними ділянками мРНК. m6A-сайти переважно зустрічаються у довгих внутрішніх екзонах і в великих кількостях зустрічаються в межах 3 'UTR та навколо стоп-кодонів. m6A-сайти в межах 3 'UTR також пов’язаний з наявністю сайтів зв'язування міРНК; приблизно 2/3 мРНК, які містять m6A-сайти в межах свого 3 'UTR, також мають щонайменше один сайт зв'язування міРНК. Враховуючи всі відомі дані про послідовність та розподіл m6A-сайтів, нова база даних під назвою RMBase виявила ~ 200 000 сайтів N6-метиладенозинів (m6A) у геномах людини та миші.
Точна локалізація m6A-сайтів за допомогою m6A-CLIP/IP [35] виявила, що більшість m6A-сайтів локалізується в останньому екзоні мРНК та навколо стоп-кодонів, яких також багато в останніх екзонах транскрипту. Переважне розташування m6A-сайтів в останньому екзоні (>= 70%) дозволяє припустити потенційну роль метилування в регуляції формування 3'UTR, включаючи альтернативне поліаденілювання. Поєднання методів m6A-CLIP та фракціонування клітинних компонентів дозволило виявити, що m6A-метилування присутне вже у ранній пре-мРНК і не грає ролі в процесах сплайсингу сплайсингу, але забезпечує регуляцію експорту мРНК до цитоплазми[36][37].
m6А-метилування піддається динамічній регуляції як протягом усього розвитку, так і у відповідь на клітинні подразники. Аналіз m6A-сайтів в РНК мозку миші виявив, що рівні m6A-метилування низькі під час ембріонального розвитку і різко зростають у зрілому віці.[15] Крім того, сайленсинг m6A-метилтрансферази суттєво впливає на експресію та процеси альтернативного сплайсингу РНК компонентів сигнального шляху p53 (також відомий як TP53 ) та апоптоз[16].
Фармакологічне інгібування m6A-метилювання за допомогою міРНК-опосередкованого сайленсингу m6A метилази Mettl3 призвело до подовження циркадного періоду. Навпаки, надекспрессія Mettl3 призвела до зкорочення періоду. Циркадний годинник ссавців, регульований низкою зворотніх зв'язків в регуляції транскрипції має період близько 24 годин, тому надзвичайно чутливий до збурень на етапах процесингу РНК залучених факторів, що залежить від m6A-метилування[38][39].
↑Beemon K, Keith J (June 1977). Localization of N6-methyladenosine in the Rous sarcoma virus genome. Journal of Molecular Biology. 113 (1): 165—79. doi:10.1016/0022-2836(77)90047-X. PMID196091.
↑Wei CM, Gershowitz A, Moss B (January 1976). 5'-Terminal and internal methylated nucleotide sequences in HeLa cell mRNA. Biochemistry. 15 (2): 397—401. doi:10.1021/bi00647a024. PMID174715.
↑Perry RP, Kelley DE, Friderici K, Rottman F (April 1975). The methylated constituents of L cell messenger RNA: evidence for an unusual cluster at the 5' terminus. Cell. 4 (4): 387—94. doi:10.1016/0092-8674(75)90159-2. PMID1168101.
↑Levis R, Penman S (April 1978). 5'-terminal structures of poly(A)+ cytoplasmic messenger RNA and of poly(A)+ and poly(A)- heterogeneous nuclear RNA of cells of the dipteran Drosophila melanogaster. Journal of Molecular Biology. 120 (4): 487—515. doi:10.1016/0022-2836(78)90350-9. PMID418182.
↑Kennedy TD, Lane BG (June 1979). Wheat embryo ribonucleates. XIII. Methyl-substituted nucleoside constituents and 5'-terminal dinucleotide sequences in bulk poly(AR)-rich RNA from imbibing wheat embryos. Canadian Journal of Biochemistry. 57 (6): 927—31. doi:10.1139/o79-112. PMID476526.
↑ абвгDominissini D, Moshitch-Moshkovitz S, Schwartz S, Salmon-Divon M, Ungar L, Osenberg S, Cesarkas K, Jacob-Hirsch J, Amariglio N, Kupiec M, Sorek R, Rechavi G (April 2012). Topology of the human and mouse m6A RNA methylomes revealed by m6A-seq. Nature. 485 (7397): 201—6. doi:10.1038/nature11112. PMID22575960.
↑Xu C, Wang X, Liu K, Roundtree IA, Tempel W, Li Y, Lu Z, He C, Min J (November 2014). Structural basis for selective binding of m6A RNA by the YTHDC1 YTH domain. Nature Chemical Biology. 10 (11): 927—9. doi:10.1038/nchembio.1654. PMID25242552.
↑Xiao W, Adhikari S, Dahal U, Chen YS, Hao YJ, Sun BF, Sun HY, Li A, Ping XL, Lai WY, Wang X, Ma HL, Huang CM, Yang Y, Huang N, Jiang GB, Wang HL, Zhou Q, Wang XJ, Zhao YL, Yang YG (February 2016). Nuclear m(6)A Reader YTHDC1 Regulates mRNA Splicing. Molecular Cell. 61 (4): 507—519. doi:10.1016/j.molcel.2016.01.012. PMID26876937. {{cite journal}}: Недійсний |displayauthors=6 (довідка)
↑Fustin JM, Doi M, Yamaguchi Y, Hida H, Nishimura S, Yoshida M, Isagawa T, Morioka MS, Kakeya H, Manabe I, Okamura H (November 2013). RNA-methylation-dependent RNA processing controls the speed of the circadian clock. Cell. 155 (4): 793—806. doi:10.1016/j.cell.2013.10.026. PMID24209618.